2019-01-19 23:03
作者
前言部分
翻译：余霞（重庆市丰都县人民医院科教科）
审校：李婷（山西省运城市中心医院）
宁永忠（清华大学附属垂杨柳医院）
附录H的缩写AST
抗微生物药物敏感性试验（余注：参见中国行标WS/T 639-2018）
ESBL 超广谱β-内酰胺酶
KPC 肺炎克雷伯菌碳青霉烯酶（宁注：英文是Klebsiella pneumoniae carbapenemase。这个很容易误解。其实就是我们平时说的KPC酶，KP是用肺炎克雷伯菌来命名，但该酶不限于该菌。也就是说，大肠埃希菌可以产生“肺炎克雷伯菌碳青霉烯酶”——字面上有些矛盾）
MIC 最低抑菌浓度
MRSA甲氧西林耐药金黄色葡萄球菌
N/A 不适合
PBP2a 青霉素结合蛋白2a
VRE 万古霉素耐药肠球菌
本附录表格提供了一种实用的方式，用于检测和报告医学实验室的结果——常规使用分子技术（伴或不伴表型检测）来检测抗微生物药物的耐药性。抗微生物药物耐药性具有遗传复杂性，基于现有数据（宁按：指既有数据有限）。分子方法通常用作筛选工具（如，鼻拭子监测MRSA）或作为传统表型方法的快速辅助（如，仪器报警血培养瓶检测KPC）。结果的解释需要深入思考和理解确认“耐药”的标志物和表型“敏感”之间的动态变化。检测出耐药性标志物并不必然预测抗微生物药物的治疗失败。该基因可能无功能，或表达水平低，不具临床意义。相反，遗传标志物的缺乏不一定表示敏感，因为技术问题可能干扰检测（如，抑制扩增，出现遗传变异）。有时，分子检测可能优于传统的表型检测，例如体外表达水平低，异质性耐药或微生物生长不佳掩盖了高值MIC。总体而言，实验室人员应努力对分子技术采取一致性的方式，并通过复检或补充试验，转至参考实验室，或根据机构政策（institutional policies）同时报告结果，来解决结果不一致的情况。
随着对抗微生物药物耐药性的分子机制的认识不断发展，毫无疑问在医学微生物学实验室会出现更尖端的分子检测技术，用以检测抗微生物药物的耐药性。以下表格将根据需要进行更新，以确保随着技术的发展相关指南能够有所体现。
表H1 用分子生物学和AST方法检测金黄色葡萄球菌对甲氧西林（苯唑西林）结果的报告策略
翻译：刘泽世（西安交通大学第二附属医院）
吕春宝（辽宁省抚顺市中心医院）
审校：王晓玲（山西省中医院）
鲁炳怀（中日友好医院）
宁永忠（清华大学附属垂杨柳医院）
缩写：AST，抗微生物药物敏感性试验；CoNS，凝固酶阴性葡萄球菌；ISH，原位杂交；MSSA，甲氧西林敏感金黄色葡萄球菌；MRSA,耐甲氧西林的金黄色葡萄球菌；N/A，不适用；NAAT，核酸扩增试验；PBP2a，青霉素结合蛋白2a；PCR，聚合酶链反应；R，耐药；S，敏感
宁按：表中没有CoNS、MSSA、MRSA等缩写，下面评论里有。
评论
1）已观察到假阳性和假阴性的PBP2a胶乳凝集试验结果[1]。
2）罕有mecA阳性金黄色葡萄球菌株对头孢西丁测试敏感[2, 3]
3）mecA PCR不能检测到mecC或mecA变异基因介导的甲氧西林耐药[4, 5]。
4）mecA阳性的CoNS和MSSA的存在，可能导致MRSA分子结果假阳性[6, 7]。
5）携带不稳定SCCmec插入的菌株，在培养过程中可能丢失mecA[8]。
6）与培养法相比，分子方法的敏感性可能较高，特异性可能较低。
7）有报道，对直接血培养检测，偶尔有mecA假阴性[9]。
8）头孢西丁诱导步骤进行ISH检测，假阳性的mecA结果应该是罕见的[10]。
9）多微生物生长时，mecA的存在不能归于特定的分离株。
10）携带缺乏mecA基因（mecA丢失）的SCCmec残体的菌株或突变的mecA等位基因的菌株，可能只有SCCmec-orfX连接区靶标检测阳性。使用只检测SCCmec-orfX连接区靶标的分子方法的实验室，可以考虑在报告中添加一个免责声明，说明所服务患者群中分离出来的mecA信号丢失分离株相关假阳性结果的比例[11]。
11）存在多种SCCmec类型；根据试验设计，可能无法检测到一些SCCmec变体[12]。
脚注
a.测试甲氧西林耐药的菌株，也是苯唑西林耐药。术语“甲氧西林R”是“苯唑西林R”的同义词。
b.除了评论中所列的具体情况外，基因型和/或表型的差异，也可能由下列原因导致：次优抽样，混合生长，新基因型或突变的出现，和/或耐药靶标的野生型逆转（wild-type reversion）。
注意：黑体信息是对上一版的增改。（宁按：表H都是黑体）
宁按：野生型逆转（wild-type reversion），第一次看到。待方家教我。
表H1的引文：从略，详见原文p257。
审阅：王 辉 北京大学人民医院
胡志东 天津医科大学总医院
